Taqman 荧光 PCR 测定原理中的关键点包括:荧光染料:Taqman 荧光 PCR 技术使用荧光染料,如 FAM、VIC、NED 等,这些染料可以与特定的寡核苷酸探针结合,在 PCR 反应过程中产生荧光信号。
寡核苷酸探针:Taqman 荧光 PCR 技术使用寡核苷酸探针,这些探针通常设计为与目标 DNA 序列特异性结合。探针的 5'端和 3'端分别标记有荧光染料和淬灭染料。荧光信号产生:在 PCR 反应过程中,Taq 酶沿着模板 DNA 链合成新的 DNA 链。当 Taq 酶遇到寡核苷酸探针时,它会切割探针,释放出荧光染料,产生荧光信号。荧光信号检测:荧光信号可以通过荧光检测仪或实时 PCR 仪进行检测。荧光检测仪可以实时监测荧光信号的强度,并将其转化为 PCR 产物的量。定量分析:通过比较荧光信号的强度与标准曲线,可以确定目标 DNA 序列的量。标准曲线是通过对已知浓度的标准 DNA 进行 Taqman 荧光 PCR 反应获得的。特异性:Taqman 荧光 PCR 技术的特异性取决于寡核苷酸探针的设计。探针必须与目标 DNA 序列高度特异性结合,以避免非特异性扩增和假阳性结果。灵敏度:Taqman 荧光 PCR 技术的灵敏度取决于荧光染料和寡核苷酸探针的浓度、PCR 反应条件和仪器的灵敏度。通过优化这些因素,可以提高 Taqman 荧光 PCR 技术的灵敏度。总之,Taqman 荧光 PCR 测定原理中的关键点包括荧光染料、寡核苷酸探针、荧光信号产生、荧光信号检测、定量分析、特异性和灵敏度。这些关键点的优化和控制对于获得准确和可靠的结果至关重要。
荧光探针法是用序列特异的荧光标记探针来检测产物,探针法的出现使得定量PCR技术的特异性比常规PCR技术大大提高。目前较常提及的有TaqMan探针、FRET杂交 探针(荧光共振能量传递探针)和分子信标Molecular Beacon。
广泛使用的TaqMan探针法是指PCR扩增时在加入一对引物 的同时另外加入一个特异性的荧光探针,该探针只与模板特异性地结合,其结合位点在两条引物之间。探针的5′端标记有荧光报告基团(Reporter, R),如FAM、VIC等,3′端标记有荧光淬灭基团(Quencher, Q),如TAMRA等。当探针完整的时候,5′端报告基团经仪器光源激发的荧光正好被近距离的3′端荧光基团淬灭,仪器检测不到5′端报告基团所激发的荧光信号(就是说5’荧光基团的发射波长正好是3’ 荧光基团的吸收波长,因而能量被吸收传递到3’荧光基团而发出其它荧光)。随着PCR的进行,Taq酶在链延伸过程中遇到与模板结合的探针,其5′-3′外切酶活性(此活性是双链特异性的,游离的单链探针不受影响)就会将切割探针,释放5′端报告基团游离于反应体系中,远离3′端荧光淬灭基团的屏蔽,5′端报告基团受激发所发射的荧光信号就可以被探头检测到。也就是说每扩增一条DNA链,就有一个荧光分子形成,实现了荧光信号的累积与PCR产物形成完全同步。报告信号的强度就代表了模板DNA的拷贝数。